Paramémo
Explorations et prélèvements

Hémocultures

Réaliser un prélèvement sanguin pour hémocultures dans des conditions d'asepsie rigoureuse afin d'identifier un agent pathogène responsable d'une bactériémie.

Contenu pédagogique destiné aux étudiants infirmiers. Ne remplace pas un avis médical.

Notre méthode

Quiz · Paramémo+

Prérequis

Vérifier la prescription médicale : nombre de paires, horaires, contexte clinique (pic fébrile, frissons)
Vérifier l'identité du patient (bracelet, question ouverte)
Vérifier l'absence d'allergie connue à l'antiseptique utilisé
Prendre connaissance des traitements en cours (antibiothérapie déjà débutée : le signaler au laboratoire)
Prélever idéalement avant l'instauration de l'antibiothérapie, dès la suspicion de bactériémie ou de sepsis

Patient

Informer le patient du geste et de son objectif : identifier le germe responsable de la fièvre
Expliquer que le geste ressemble à une prise de sang, mais que les conditions d'asepsie sont plus strictes pour éviter de fausser les résultats
Évaluer la douleur et proposer un antalgique si prélèvements multiples
Installer confortablement le patient, bras accessible et bien éclairé

Matériel

Flacons d'hémoculture aérobie et anaérobie (1 paire minimum)Antiseptique alcoolique (chlorhexidine alcoolique 2 % ou povidone iodée alcoolique)Compresses stérilesAiguille à ailettes ou système de prélèvement sous videGarrotGants non stérilesCollecteur OPCT à portée de mainÉtiquettes patient pré-impriméesBon de demande de bactériologie

Évaluation clinique

2 min
Observer l'état clinique du patient avant le prélèvement.
Prendre la température et noter l'heure exacteRechercher les signes de sepsis : frissons, marbrures, tachycardie, hypotensionVérifier le site de ponction : repérer une veine périphérique accessible, éviter les membres perfusés

Hygiène des mains et préparation du matériel

2 min
Réaliser une friction hydroalcoolique et ouvrir le matériel sur un champ propre.
Friction SHA jusqu'au séchage complet, environ 30 secondesVérifier les dates de péremption des flaconsDésinfecter les bouchons des flacons avec une compresse imbibée d'antiseptique alcoolique
Ne jamais toucher les bouchons des flacons après désinfection.

Antisepsie cutanée rigoureuse

2 min
Réaliser une antisepsie du site de ponction selon le protocole du service (en 4 temps ou en 2 temps selon les recommandations locales).
Antisepsie en solution alcoolique (SF2H 2016) : nettoyage préalable seulement en cas de souillure visible, puis application de l'antiseptique alcoolique sur peau propreCertains protocoles de service appliquent encore une détersion systématique en 4 temps (détersion, rinçage, séchage, antiseptique) : suivre le protocole localMouvement centrifuge dans tous les cas : du centre vers la périphérieLaisser sécher complètement l'antiseptique avant de ponctionner (minimum 30 secondes)
L'efficacité bactéricide de l'antiseptique alcoolique est maximale après séchage complet. Ne jamais ponctionner sur peau humide.

Ponction veineuse

1 min
Réaliser la ponction en maintenant l'asepsie stricte.
Poser le garrot en amont du site préparé sans toucher la zone désinfectéeNe plus palper la veine après l'antisepsie (repérage avant)Ponctionner en insérant l'aiguille biseau vers le haut
Ne jamais repalper la veine après l'antisepsie : c'est la première cause de contamination.

Remplissage des flacons

2 min
Remplir les flacons dans l'ordre correct et au volume requis.
Flacon aérobie en premier (si prélèvement sur dispositif à ailettes, l'air dans la tubulure entre dans le premier flacon)Flacon anaérobie en secondVolume requis : 8 à 10 mL par flacon chez l'adulte (le volume est le facteur le plus important pour la sensibilité)Surveiller le remplissage : un sous-remplissage diminue la sensibilité de l'examen

Retrait et élimination

1 min
Retirer l'aiguille et éliminer le matériel piquant immédiatement.
Retirer le garrot puis l'aiguilleComprimer le point de ponction avec une compresse sècheÉliminer immédiatement l'aiguille dans le collecteur OPCT sans recapuchonnerAppliquer un pansement sec

IDE

Identification et acheminement

2 min
Étiqueter les flacons au lit du patient et acheminer rapidement au laboratoire.
Étiqueter chaque flacon devant le patient (nom, prénom, date de naissance, date et heure du prélèvement)Renseigner le bon de demande : température au moment du prélèvement, antibiothérapie en cours, site de prélèvementAcheminer les flacons au laboratoire idéalement dans les 2 heures, à température ambiante ; à défaut jusqu'à 12 heures (au-delà, risque de faux négatif)
Ne jamais réfrigérer les flacons d'hémocultures : le froid ralentit la croissance bactérienne et retarde le diagnostic.

IDE

Traçabilité

Documenter le prélèvement dans le dossier de soins.
Noter : heure exacte, température au prélèvement, site de ponction, nombre de paires, antibiothérapie en cours ou nonTransmettre à l'équipe médicale que le prélèvement est fait

Repalper la veine après l'antisepsie

Repérer la veine avant l'antisepsie. Après l'antisepsie, ne plus toucher la zone.

Pourquoi

Le doigt recontamine la zone désinfectée. C'est la première cause de faux positif par contamination cutanée, qui entraîne des examens et traitements inutiles.

Sous-remplir les flacons

Viser 8 à 10 mL par flacon chez l'adulte. Vérifier visuellement le niveau de remplissage.

Pourquoi

Le volume de sang est le facteur le plus important pour la sensibilité de l'examen. Un flacon à moitié rempli diminue la probabilité de détecter le germe.

Multiplier les ponctions sur des sites différents en pensant mieux distinguer une contamination

Privilégier une ponction unique et répartir le sang sur plusieurs flacons bien remplis. Réserver les prélèvements multiples espacés à la suspicion d'endocardite (3 prélèvements espacés d'au moins 1 h sur 24 h) et à la pédiatrie.

Pourquoi

La recommandation actuelle (REMIC) privilégie une ponction unique bien réalisée avec 4 à 6 flacons bien remplis (40 à 60 mL sur 24 h) : le volume prime, et multiplier les ponctions augmente le risque de contamination cutanée.

Réfrigérer les flacons en attendant le transport

Conserver les flacons à température ambiante et les acheminer rapidement (idéalement dans les 2 heures, au plus tard 12 heures).

Pourquoi

Le froid inhibe la croissance bactérienne dans le milieu de culture. Le temps de détection augmente et certaines bactéries fragiles peuvent mourir.

Prélever sans friction hydroalcoolique préalable

Réaliser une friction SHA de 30 secondes avant d'enfiler les gants. Les gants ne remplacent pas l'hygiène des mains.

Pourquoi

Les mains du soignant sont un vecteur de contamination du matériel et du site de ponction, même avec des gants.

Travailler debout penché au-dessus du patient sans adapter la hauteur du lit

Monter le lit à hauteur de travail et s'asseoir si possible pour stabiliser le geste.

Pourquoi

Le prélèvement demande de la précision. Une posture penchée prolongée entraîne des douleurs lombaires et augmente le risque de geste imprécis.

Mnémo

ASVA : Antisepsie alcoolique, Séchage complet, Volume 8-10 mL, Acheminement rapide (idéalement < 2 h)

Le volume de sang dans les flacons est le facteur numéro un de sensibilité de l'examen
Prélever avant l'antibiothérapie et dès la suspicion de bactériémie, sans attendre un pic fébrile franc
Jamais de repalpation après l'antisepsie : le doigt est la première source de contamination
Flacon aérobie en premier si prélèvement avec système à ailettes
Signaler systématiquement une antibiothérapie déjà en cours sur le bon de demande
Ne jamais réfrigérer les flacons : température ambiante jusqu'au laboratoire

Surveiller

Vérifier l'absence de saignement ou d'hématome au point de ponction
Surveiller la courbe thermique pour le prélèvement de la paire suivante si prescrit
Vérifier que les résultats sont bien réceptionnés et transmis au médecin

Transmettre et noter

Méthode DAR : heure du prélèvement, température, nombre de paires, site, antibiothérapie en cours
Signaler au médecin tout résultat positif communiqué par le laboratoire
Transmettre les difficultés éventuelles : veine difficile, volume insuffisant, antisepsie compromise

Objectifs

Identifier l'agent pathogène responsable d'une bactériémie ou d'une fongémie
Permettre la réalisation d'un antibiogramme pour adapter l'antibiothérapie
Contribuer au diagnostic de sepsis ou d'endocardite infectieuse

Indications

Fièvre > 38,5 °C ou hypothermie < 36 °C avec suspicion d'infection
Frissons intenses (bactériémie probable)
Suspicion d'endocardite infectieuse (3 prélèvements espacés d'au moins 1 heure sur 24 h)
Fièvre persistante sous antibiothérapie (réévaluation)
Avant toute instauration d'antibiothérapie probabiliste en contexte septique

Contre-indications

Prélèvement sur un membre porteur d'une fistule artério-veineuse (risque de thrombose)
Prélèvement en aval d'une perfusion en cours (dilution, faux négatif) : privilégier le bras opposé

Contamination du prélèvement (faux positif)

Hémoculture positive à un germe cutané (staphylocoque coagulase-négative) sur 1 seule paire
Discordance entre la clinique et le résultat microbiologique

Conduite

Confronter le résultat au contexte clinique et aux autres paires : une seule paire positive à un germe cutané est le plus souvent une contamination.

Hématome au point de ponction

Gonflement localisé et douleur au site de prélèvement
Ecchymose étendue

Conduite

Comprimer 5 minutes, appliquer du froid, surveiller l'extension.

Références

Référentiel en microbiologie médicale (REMIC 7) · SFM · 2022

Antisepsie de la peau saine avant un geste invasif chez l'adulte · SF2H · 2016

Bonnes pratiques de prélèvement des hémocultures (séminaire DESC) · SPILF · 2023

Autres protocoles explorations et prélèvements
ECBUÉlectrocardiogramme (ECG)Assistance ponction lombairePrélèvement capillaire (glycémie)Prélèvement sanguin veineux

Contenu pédagogique destiné aux étudiants infirmiers. Ne remplace pas un avis médical professionnel ni les protocoles institutionnels en vigueur.

Les recommandations évoluent. Se référer systématiquement aux sources officielles (HAS, ANSM, RCP, sociétés savantes) et aux protocoles de l'établissement avant tout acte de soin.