Prélèvement sanguin veineux

Réaliser une ponction veineuse pour analyses biologiques en respectant l'identitovigilance, l'asepsie et la qualité pré-analytique.

Contenu pédagogique destiné aux étudiants infirmiers. Ne remplace pas un avis médical.

Notre méthode

Prérequis

Vérifier la prescription médicale : analyses demandées, conditions particulières (jeûne, heure)
Vérifier l'identité du patient par question ouverte + 2 identifiants concordants (bracelet, prescription)
Évaluer le capital veineux : examiner les deux bras, identifier les contre-indications locales
Vérifier l'absence de perfusion, fistule artério-veineuse ou lymphoedème sur le bras choisi

Patient

Expliquer le geste et sa durée (quelques minutes)
Rechercher les antécédents de malaise vagal : si présents, installer le patient allongé
Installer confortablement : bras allongé sur un support stable, bien éclairé
Informer : ne pas plier le bras après le prélèvement, maintenir la compression

Matériel

Système de prélèvement sous vide (corps de prélèvement + aiguille 21G ou ailette)Tubes de prélèvement dans l'ordre requisGarrotCompresses stérilesAntiseptique (alcool 70° ou chlorhexidine alcoolique)Gants à usage uniquePansement compressifConteneur OPCTÉtiquettes patient (à apposer au lit du patient après le prélèvement)

IDE

Identification et vérification

2 min
Vérifier l'identité du patient et les conditions de prélèvement avant tout geste.
Question ouverte : « Quel est votre nom, prénom et date de naissance ? »Concordance avec le bracelet d'identification et la prescriptionVérifier les conditions de prélèvement : jeûne respecté, traitements en cours signalésConfirmer les analyses prescrites et préparer les tubes correspondants

Choix du site de ponction

1 min
Examiner les deux bras et sélectionner la veine la plus adaptée.
Privilégier la fosse antécubitale (veine médiane, basilique ou céphalique)Éviter le bras porteur d'une perfusion, d'une fistule ou d'un lymphoedèmePalper la veine pour évaluer sa profondeur et sa mobilitéChoisir une zone indemne de lésion ou d'infection

Hygiène des mains et pose du garrot

1 min
Friction SHA, enfiler les gants, poser le garrot pour faciliter le repérage veineux.
Friction hydroalcooliqueEnfiler les gants à usage uniquePoser le garrot à 10 cm au-dessus du site de ponctionVérifier que le pouls radial reste perceptible (garrot pas trop serré)
Le garrot ne doit pas rester plus d'une minute : au-delà, hémoconcentration qui fausse les résultats.

Antisepsie et ponction

1 min
Désinfecter la zone, laisser sécher, puis réaliser la ponction veineuse.
Antisepsie du centre vers l'extérieur, laisser sécher spontanémentNe plus toucher la zone désinfectéeTendre la peau en aval du point de ponction avec le pouceInsérer l'aiguille biseau vers le haut, angle d'environ 30 degrés

Remplissage des tubes dans l'ordre

2-3 min
Connecter les tubes dans l'ordre standardisé et homogénéiser.
Ordre des bouchons : hémocultures, bleu (citrate), jaune (sérum), vert (héparine), violet (EDTA), gris (fluorure)Avec une unité à ailettes, purger d'abord avec un tube neutre ou sec avant le tube citrate : l'air de la tubulure sous-remplirait le citrate et fausserait le ratio 9:1 (GEHT)Desserrer le garrot dès que le sang coule dans le premier tubeRemplir chaque tube jusqu'au trait de jauge (volume requis)Homogénéiser par 5 à 8 retournements lents après chaque tube
Ne jamais secouer les tubes : 5-8 retournements lents pour homogénéiser sans hémolyser.

Retrait et compression

3-5 min
Retirer l'aiguille, comprimer immédiatement et éliminer le matériel en sécurité.
Retirer l'aiguille délicatementComprimer immédiatement le point de ponction avec une compresse : 3 à 5 minutesÉliminer l'aiguille directement dans le conteneur OPCT (ne jamais recapuchonner)Poser un pansement compressif après vérification de l'hémostase

IDE

Étiquetage au lit du patient

2 min
Étiqueter chaque tube au lit du patient, immédiatement après le prélèvement.
Apposer les étiquettes sur chaque tube en présence du patientVérifier la concordance : nom, prénom, date de naissance, numéro de séjourVérifier que chaque tube est correctement identifié et rempli au volume requis
Étiqueter au lit du patient, JAMAIS à l'avance en salle de soins.

Acheminement et traçabilité

3 min
Conditionner les échantillons et les acheminer au laboratoire dans les délais.
Conditionner selon les exigences du laboratoire (température, chaîne du froid si nécessaire)Acheminer rapidement au laboratoire (délai maximal selon les analyses)Tracer le prélèvement dans le dossier : heure, bras, conditions particulièresSignaler toute condition particulière au laboratoire (bras perfusé, garrot prolongé)

Étiqueter les tubes à l'avance en salle de soins

Étiqueter au lit du patient, immédiatement après le prélèvement, en vérifiant la concordance avec le bracelet.

Pourquoi

L'étiquetage préalable est la première cause d'erreur d'identitovigilance. Un tube étiqueté pour le mauvais patient peut entraîner un diagnostic erroné ou un traitement inadapté.

Laisser le garrot en place trop longtemps

Desserrer le garrot pendant l'antisepsie, resserrer juste avant la ponction, relâcher dès le premier tube.

Pourquoi

Au-delà d'une minute, l'hémoconcentration élève les grosses molécules (protéines, enzymes, calcium, bilirubine), jusqu'à +10 à 20 %. Le potassium, lui, monte surtout par le pompage du poing (à proscrire) et l'hémolyse, pas par la stase du garrot.

Ne pas respecter l'ordre des tubes

Respecter l'ordre HBJVVG : Hémocultures, Bleu, Jaune, Vert, Violet, Gris.

Pourquoi

La contamination croisée par les additifs fausse les résultats. L'EDTA dans le tube citrate chélate le calcium et rend le TP/INR ininterprétable.

Secouer les tubes au lieu de retourner lentement

5 à 8 retournements lents et complets après chaque tube. Ne jamais secouer.

Pourquoi

L'agitation violente provoque l'hémolyse : destruction des globules rouges, fausse hyperkaliémie, LDH et ASAT faussement élevés.

Ne pas ajuster sa position de travail

Régler la hauteur du bras du patient et la position du soignant avant de commencer. Éclairage suffisant.

Pourquoi

Une mauvaise posture augmente le risque de piqûre accidentelle et rend le geste moins précis. La fatigue posturale s'accumule sur une série de prélèvements.

Piquer sans prévenir le patient

Expliquer le geste, prévenir avant de piquer, demander si le patient a des antécédents de malaise.

Pourquoi

Un patient non prévenu sursaute et contracte le bras, rendant la ponction difficile. L'anxiété non prise en charge augmente le risque de malaise vagal.

Mnémo

HBJVVG : Hémocultures, Bleu, Jaune, Vert, Violet, Gris (ordre des bouchons, mnémonique)

Garrot < 1 minute : au-delà, hémoconcentration qui fausse les résultats
Étiquetage au lit du patient, JAMAIS à l'avance en salle de soins
5-8 retournements lents pour homogénéiser, JAMAIS secouer (risque d'hémolyse)
Identitovigilance : question ouverte + 2 identifiants concordants avant tout prélèvement
Malaise vagal : allonger immédiatement, jambes surélevées, surveiller pouls et conscience

Surveiller

Vérifier l'hémostase au point de ponction après 3 à 5 minutes de compression
Rechercher un hématome au point de ponction
Surveiller l'état général du patient pendant 5 minutes si facteurs de risque de malaise vagal
Donner les consignes : ne pas plier le bras, ne pas porter de charge lourde pendant 1 heure

Paramètres

Point de ponctionImmédiatement après le geste
Saignement persistant malgré la compression
Hématome en expansion
Douleur anormale irradiant dans la main (lésion nerveuse)
État général du patientPendant et 5 min après le prélèvement
Pâleur, sueurs, sensation de vertige
Bradycardie (malaise vagal)

Transmettre et noter

Heure du prélèvement et bras utilisé
Conditions particulières (jeûne, garrot prolongé, bras perfusé)
Nombre et type de tubes prélevés
Incidents éventuels (malaise vagal, hématome, prélèvement difficile)

Objectifs

Obtenir un échantillon sanguin de qualité pour des analyses fiables
Respecter l'identitovigilance à chaque étape du prélèvement
Prévenir les erreurs pré-analytiques (hémolyse, hémoconcentration, contamination croisée)
Assurer la sécurité du patient pendant le geste

Indications

Analyses biochimiques et hématologiques
Surveillance thérapeutique (dosages médicamenteux)
Bilans pré-opératoires
Hémocultures (suspicion d'infection systémique)

Contre-indications

Infection locale au point de ponction prévu
Fistule artério-veineuse sur le bras (accès d'hémodialyse)
Lymphoedème du membre (risque infectieux)
Troubles majeurs de l'hémostase (prélèvement avec précautions et compression prolongée)

Hématome au point de ponction

Ecchymose visible
Gonflement douloureux

Conduite

Compression prolongée, application de froid. Rassurer le patient : fréquent et bénin.

Malaise vagal

Pâleur, sueurs froides
Bradycardie, hypotension
Sensation de vertige ou perte de connaissance

Conduite

Arrêter le prélèvement, retirer l'aiguille en sécurité, allonger avec jambes surélevées, surveiller pouls et conscience.

Hémolyse de l'échantillon

Sérum rosé ou rouge au laboratoire
Résultats faussés (K+, LDH, ASAT élevés artificiellement)

Conduite

Signaler au laboratoire. Reprélever si les résultats sont indispensables.

Ponction artérielle accidentelle

Sang rouge vif, pulsatile

Conduite

Retirer l'aiguille, comprimer 10 minutes minimum. Signaler au médecin.

Lésion nerveuse

Douleur vive irradiant dans la main ou les doigts
Paresthésies (fourmillements)

Conduite

Retirer l'aiguille immédiatement. Signaler au médecin. Ne jamais insister sur un point douloureux.

Références

Recommandations pré-analytiques en hémostase (ordre des tubes, garrot, citrate) · GEHT · 2015

Recommandations de biologie d'urgence · SFBC · 2016

Antisepsie de la peau saine avant un geste invasif chez l'adulte · SF2H · 2016

Contenu pédagogique destiné aux étudiants infirmiers. Ne remplace pas un avis médical professionnel ni les protocoles institutionnels en vigueur.

Les recommandations évoluent. Se référer systématiquement aux sources officielles (HAS, ANSM, RCP, sociétés savantes) et aux protocoles de l'établissement avant tout acte de soin.